消化時間過長會導致細胞膜蛋白的改變，最直觀的表現就是消化后第二天漂浮細胞很多或者貼壁慢。

建議二次消化。細胞與細胞間的連接沒有通過酶切開的話，用移液槍進行吹散后細胞會被撕裂，直接導致細胞不貼壁甚至死亡。

懸浮細胞聚團，要分情況進行處理：

? 原本就是聚團生長的細胞，不用干預，比如NK-92等就是聚團生長；

? 如果是非聚團生長的細胞，比如THP-1聚團了，要區分高密度和低密度。高密度可以輕輕吹散細胞后進行低速離心，去除里面夾雜的死細胞，正常傳代即可改善；

? 非聚團生長的細胞低密度時，聚團一般是細胞狀態不太好，需要調整狀態。排查是否有污染以及培養環境合不合適等問題，對癥改善后細胞即可正常生長，聚團改善；

? 剛復蘇的懸浮細胞也會出現聚團，一般是靜置培養和少動，期間可以用補液和半換液的方式培養，等細胞密度長起來，生長至對數生長期時，團塊問題也會改善。

這個情況比較符合血清沉淀或者細胞碎片分泌物之類的，一般不用過于關注，細胞能夠茁壯生長就可以了。

如果是豬的肺組織提取的原代巨噬細胞，一般是終末分化的細胞，是不能增殖的，只能轉移到孔板做實驗。

一般要做分泌蛋白都是不建議加血清的。血清里面可能有一些蛋白類未知成分，不排除會和實驗的目標蛋白有反應或者類似，所以通常都是用的無血清。

原代組織分離后體外培養通常會有類似的問題，需要選擇合適的包被試劑進行輔助貼壁，這是原代提取比較常見的操作。

首先是細胞消化后盡量成單顆，鋪板的時候需要練習下手法，不要有旋渦產生，導致分布不均勻；除開鋪板手法外，細胞本身特性導致的容易聚團生長，可以嘗試包被培養瓶以后低密度接種細胞，可能會達到比較好的單層貼壁的情況。

胰蛋白酶屬于酶制品，受溫度影響，反復的4℃- 37℃的溫度波動反而會導致酶失活，效果不好，所以不建議37℃復溫。4℃拿出來可以直接用，加入到細胞消化的時候放進培養箱就好了。

這種情況一般還是消化不充分導致，建議可以適當延長消化時間，待細胞與細胞間的連接打開后再進行吹散，一般是很容易吹散的。